Стр. 2
Страницы:
Стр.1 |
Стр.2 |
Стр.3 |
Стр.4 |
Стр.5 |
Стр.6
населенном пункте (в частности, среди привитых разных возрастных
групп) в результате прививок или вследствие других мероприятий;
3. выяснить, предотвратили ли прививки определенное число
случаев брюшного тифа, несмотря на отсутствие снижения или рост
заболеваемости;
4. уточнить, связано ли отсутствие эффективности
вакцинопрофилактики с неправильным планированием и осуществлением
прививок или какой-либо иной причиной.
Могут быть представлены и решены также и другие задачи. Для
решения этих вопросов нет необходимости в специально оформленной
контрольной группе. Однако, определенная система учета, регистрации,
предварительный подбор населенных пунктов с повышенной
заболеваемостью брюшным тифом, достаточная численность наблюдаемых
контингентов, исключение из учета лиц с постоянными
противопоказаниями к прививкам, целенаправленный анализ данных
уменьшают вероятность ошибочных выводов.
Очевидно, что статистически значимые данные можно получить,
если наблюдения будут проведены в населенных пунктах с высоким
уровнем заболеваемости брюшным тифом (но не паратифами). При этом
нужно ориентироваться, в основном, на случаи, подтвержденные
выделением возбудителя из крови и испражнений, при ясной клинической
картине болезни. Результаты серологического исследования при
постановке диагноза могут быть использованы только в случае
нарастания не менее чем в 4 раза титра антител к брюшнотифозному
диагностикуму в динамике заболевания. Следует учитывать, что РПГА с
групповыми диагностикумами более специфична, чем реакция Видаля.
Ввиду наличия общих антигенов у брюшнотифозных и паратифозных А
и В микробов результаты серологического исследования для
дифференциации брюшного тифа от паратифов могут приниматься во
внимание только в том случае, когда разница конечных титров с
соответствующими диагностикумами будет достигать не менее трех
разведений.
Основные данные об эффективности вакцинопрофилактики брюшного
тифа могут быть получены при сопоставлении удельного веса (процента)
заболевших брюшным тифом среди привитых и непривитых. Эти сведения
должны быть получены исключительно только на основе анализа
первичного материала (индивидуальные карты, журналы, истории болезни
и др.).
Кроме того, непременным условием для правильной оценки
эффективности вакцинопрофилактики является квалифицированный
санитарно-эпидемиологический анализ.
Этот анализ включает сбор и обработку данных согласно
существующим показателям по водоснабжению, канализованию и очистке
населенных мест и отдельных микроучастков, особенно неблагополучных
по заболеваемости.
Анализируется заболеваемость раздельно брюшным тифом и
паратифами А и В за 5 лет (по возрасту, полу, роду занятий,
показателям сезонности). Такой анализ должен быть увязан с
конкретными территориями населенных пунктов, взятых под наблюдение.
С этой целью желательно, чтобы каждый случай заболевания брюшным
тифом и паратифами А и В был нанесен на карту населенного пункта.
Следует также учесть данные об источниках и факторах передачи
инфекции. Поэтому каждый очаг должен обследоваться
врачом-эпидемиологом.
Изменение заболеваемости в период наблюдения по всем или
некоторым из упомянутых показателей необходимо учитывать при оценке
эффективности вакцинопрофилактики брюшного тифа.
Фагопрофилактика
Наряду с вакцинацией, для профилактики брюшного тифа и
паратифов могут быть использованы бактериофаги: брюшнотифозный или
поливалентный сальмонеллезный (для профилактики паратифов).
Противопоказаний к применению бактериофага нет.
Бактериофаг применяется для предохранения от заболевания
брюшным тифом и паратифами лиц, общавшихся с больными или
реконвалесцентами в очаге. Бактериофаг назначается трехкратно с
интервалом в 3-4 дня. При этом первое назначение фага должно быть
после забора у фагируемых материала для бактериологического
исследования. В случае возникновения вспышки, наряду со всем
комплексом противоэпидемических мероприятий, проводят широкое
фагирование населения, подвергавшегося риску заражения на данной
территории, населенном пункте, микроучастке. Продолжительность
применения бактериофага определяется врачом-эпидемиологом, но не
менее трех недель с момента госпитализации последнего больного.
Схема применения бактериофага та же, что и при применении его в
очаге.
При угрозе возникновения вспышки брюшного тифа и паратифов
лицам, не подлежащим вакцинации (дети в возрасте до 7 лет, лица,
имеющие противопоказания), с профилактической целью назначается
бактериофаг.
На территориях с устойчиво высоким уровнем заболеваемости
брюшным тифом на протяжении сезонного подъема целесообразно
проводить фагирование хронических бактерионосителей с целью
уменьшения их эпидемической опасности.
При неблагоприятной эпидемической ситуации в отдельном
учреждении (психиатрическая больница, интернат для престарелых и
др.) или в коллективе людей, находящихся в неудовлетворительных
санитарно-гигиенических условиях, для предупреждения возникновения
повторных заболеваний показано проведение сплошного фагирования.
Организационно-методическое руководство фагопрофилактикой и
обеспечение бактериофагом возлагаются на санитарно-эпидемическую
службу. Непосредственное проведение фагирования осуществляет
участковый медицинский персонал. В отдельных случаях фагирование
может быть доверено самому населению.
Методы выделения возбудителей брюшного тифа и паратифов из воды
1. Питьевая вода.
В питьевой воде возбудители инфекционных заболеваний, в т.ч. и
брюшного тифа, могут находиться в небольшом количестве, что
обуславливает необходимость исследовать большие ее объемы - 2-3
литра. С целью повышения эффективности исследования необходимо
применять методы концентрирования. При исследовании питьевой воды на
наличие возбудителей брюшного тифа и паратифов рекомендуется
использовать один из следующих методов концентрирования: метод
мембранных фильтров или метод осаждения.
1.1. Метод мембранных фильтров.
1.1.1. Выполнение анализа.
Подготовка мембранных фильтров и фильтровального аппарата к
работе, фильтрование воды производят по ГОСТу 18963-73.
После окончания фильтрования воронку снимают, фильтр осторожно
фламбированным пинцетом переносят в емкость с 50-100 мл среды
накопления. Рекомендуется использовать две среды накопления:
1) селенитовый бульон;
2) среда с охмеленным суслом.
1.1.2. Засеянные среды накопления инкубируют при температуре
37°С в течение 18-20 ч, затем из каждой среды накопления делают
высевы бактериологической петлей на 3 чашки с висмут-сульфит агаром.
Чашки с посевами инкубируют 20-24 ч при температуре 37°С, а в случае
отсутствия роста - еще 24 часа.
1.1.3. С каждой чашки снимают на
дифференциально-диагностические среды (Олькеницкого или Ресселя) по
3-5 подозрительных на возбудителей брюшного тифа и паратифов
колоний. Как правило, на висмут-сульфит агаре это колонии черного
цвета с характерным металлическим блеском, при этом наблюдается
прокрашивание участка среды под колонией в черный цвет. S.paratyphi
A могут образовывать светлые или зеленоватые, нежные колонии.
Засеянные дифференциально-диагностические среды инкубируют
18-20 часов при температуре 37°С.
1.1.4. Дальнейшее изучение отобранных колоний производят в
соответствии с "Методическими указаниями по микробиологической
диагностике заболеваний, вызываемых энтеробактериями" (МЗ СССР,
1984).
1.2. Метод осаждения.
К 3 л исследуемой воды добавляют 9,0 мл 10-процентного водного
раствора соды питьевой и 10,5 мл 10-процентного раствора соли Мора.
Оба раствора должны быть стерильны. Все перемешивают и оставляют в
покое при комнатной температуре на 18-24 часа. Затем осторожно, не
взмучивая осадка, при помощи стерильного резинового шланга и груши
сливают надосадочный прозрачный слой жидкости. Осадок вместе с
оставшейся жидкостью (около 150-250 мл) засевают в среды накопления:
селенитовый бульон двойной концентрации (соотношение среды
накопления и исследуемого осадка 1:1) и среду с охмеленным суслом
(соотношение среды накопления и исследуемой пробы 1:1).
Дальнейший ход исследования - по пп.1.1.2, 1.1.3, 1.1.4.
Если по каким-либо причинам нет возможности использовать методы
концентрирования, то исследуемую водопроводную воду (2-3 л) следует
разделить на 4-6 объемов по 0,5 л и к 2-3 объемам добавить сухой
селенитовый бульон в соответствии с прописью на этикетке, а к другим
2-3 объемам по 0,5 л добавить среду с охмеленным суслом (соотношение
исследуемой воды и питательной среды 4:1).
Дальнейший ход исследования - в соответствии с пп.1.1.2, 1.1.3,
1.1.4.
2. Вода поверхностных водоемов.
Для обнаружения возбудителей брюшного тифа и паратифов в воде
водоемов необходимо исследовать 1 л на двух средах накопления
параллельно. К объему исследуемой воды 0,5 л добавляют 0,5 л
селенитового бульона двойной концентрации, тщательно перемешивают и
полученный объем 1 л делят на две части. К оставшемуся объему 0,5 л
исследуемой воды добавляют 125 мл среды с охмеленным суслом,
перемешивают и также делят на 2 части.
Дальнейший ход исследования - в соответствии с пп.1.1.2, 1.1.3,
1.1.4.
3. Сточная вода.
При исследовании сточной воды значительные трудности
представляет наличие большого количества посторонней микрофлоры. С
целью снижения ее содержания рекомендуется исследуемый объем сточных
вод 100 мл развести в 10 раз стерильной водопроводной водой. После
чего полученный объем 1 л исследовать так же, как воду водоемов.
Параллельно с посевом на среды накопления можно сделать прямой высев
сточной воды на висмут-сульфит агар.
4. Питательные среды.
4.1. Среда с охмеленным суслом.
Охмеленное сусло, отобранное на пивоваренном заводе с
соблюдением правил асептики в стерильную посуду, хранят в
холодильнике при 4°С до 3-4 недель.
Среду с охмеленным суслом готовят ex tempore следующим образом:
100 мл охмеленного сусла наливают в стерильную посуду, добавляют 5 г
пептона, кипятят, перемешивая на медленном огне в течение 5-10 мин,
остужают, приливают 400 мл исследуемой воды (соотношение питательной
среды к воде 1:4). Для подращивания микробов на мембранных фильтрах
к 10 мл среды с охмеленным суслом добавляют 40 мл стерильной
водопроводной воды (соотношение 1:4). Устанавливают рН в пределах
7,2-7,5, добавляя по каплям 20-процентный раствор едкого натрия
(NaOH). Затем добавляют 7-9 мл 0,1-процентного водного раствора
бриллиантового зеленого (в зависимости от предполагаемой степени
загрязнения исследуемой воды посторонней микрофлорой).
4.2. Селенитовая среда.
Основной раствор.
1. Натрий фосфорнокислый двузамещенный безводный Na2HPO4 - 7 г.
2. Натрий фосфорнокислый однозамещенный NaH2PO4 - 3 г.
3. Пептон - 5 г.
4. Лактоза - 2-4 г.
5. Дистиллированная вода - 1000 мл.
Стерилизуют текучим паром 2 дня по 30 мин или при 112°С 30 мин.
Основной раствор может храниться при температуре 4-10°С 1-2 мес.
Раствор кислого селенистокислого натрия. В 100 мл стерильной
дистиллированной воды растворяют 5 г натрия кислого
селенистокислого. Готовят ex tempore.
Перед началом работы среду накопления готовят из двух
растворов: к 100 мл основного раствора добавляют 4 мл раствора
кислого селенистокислого натрия.
При работе с селенитовой средой накопления следует обратить
особое внимание на два фактора, которые существенным образом влияют
на эффективность ее работы.
1) Предварительно необходимо подтитровать количественное
соотношение в среде Na2HPO4 и NaH2PO4, чтобы с используемыми
образцами пептона и кислого селенистокислого натрия среда имела pH
7,0. Такую предварительную подтитровку необходимо делать при смене
каждого из указанных компонентов среды.
2) Большое значение имеет качество пептона. Рекомендуется
использовать импортный пептон или ферментативный гидролизат казеина
неглубокой степени расщепления.
4.3. Сухой селенитовый бульон Дагестанского НИИ по производству
питательных сред.
Дезинфекция при брюшном тифе и паратифах
Организация и проведение текущей и заключительной дезинфекции в
квартирных очагах, школах, детских, лечебно-профилактических и
других учреждениях при брюшном тифе и паратифах.
1. Проведение дезинфекции при брюшном тифе и паратифах строго
обязательно.
2. Текущую дезинфекцию проводят в период с момента выявления
больного до его госпитализации, у реконвалесцентов - после выписки
из больницы в течение трех месяцев, имея в виду возможность рецидива
заболевания и бактерионосительства, и у хронических
бактерионосителей. Режимы дезинфекции указаны в таблице 1. Текущую
дезинфекцию проводит лицо, ухаживающее за больным, сам
реконвалесцент или бактерионоситель.
3. Медицинский работник лечебного учреждения в очаге на дому у
больного, бактерионосителя или реконвалесцента при организации
текущей дезинфекции обучает проживающих в нем методам ее проведения.
4. Заключительную дезинфекцию выполняют дезинфекционные станции
или дезинфекционные отделы центров гигиены и эпидемиологии, в
сельской местности - районные центры гигиены и эпидемиологии,
сельские врачебные больницы, амбулатории.
5. Заключительную дезинфекцию в городах проводят под
руководством врача-дезинфекциониста или врача-эпидемиолога, в
сельской местности - под руководством врача, фельдшера или помощника
эпидемиолога. Специалистами санэпидучреждений, дезинфекционных
станций проводится выборочный контроль качества заключительной
дезинфекции в очаге брюшного тифа.
6. Заключительную дезинфекцию в городах проводят не позже шести
часов, в сельской местности - 12 часов после госпитализации
больного.
7. Порядок проведения и объем заключительной дезинфекции
определяются врачом-дезинфекционистом или другим медицинским
работником, указанным в пункте 5.
8. В случае выявления больного брюшным тифом или паратифом на
амбулаторно-поликлиническом приеме или в лечебно-профилактическом
учреждении после изоляции больного в помещениях, где он находился,
проводят заключительную дезинфекцию силами персонала данного
учреждения по режимам, указанным в таблице 1.
Таблица 1
Методы и средства дезинфекции при брюшном тифе и паратифах
---------------------T--------------------------------------T------------
¦Методы и средства обеззараживания при:¦
Объекты, подлежащие +----------------T---------------------+ Примечание
дезинфекции ¦ заключительной ¦текущей дезинфекции и¦
¦ дезинфекции ¦карантине ¦
---------------------+----------------+---------------------+------------
1 ¦ 2 ¦ 3 ¦ 4
---------------------+----------------+---------------------+------------
1. Выделения Засыпают сухой Так же, как при При необхо-
(фекалии, моча, хлорной заключительной димости к
рвотные массы) известью, сухой дезинфекции оформленным
известью фекалиям
белильной добавляют
термостойкой из воду в
расчета 200 г/кг соотношении
или двутреть- 1:4. При
основной солью карантине
гипохлорита выделения
кальция (ДТС ГК) контактных
- 100 г/кг на 60 не обезза-
мин, нейтральным раживают
гипохлоритом
кальция (НГК) -
150 г/кг на 120
мин, натриевой
(калиевой) солью
дихлоризоциану-
ровой кислоты
(ДХЦК) - 100
г/кг на 120 мин
или заливают 15%
раствором
метасиликата
натрия в
соотношении 2:1
на 240 мин
Моча Добавляют сухую
хлорную известь
или известь
белильную
термостойкую из
расчета 10 г на
литр или ДТС ГК
или НГК - 5 г/л
перемешивают и
оставляют на 5
мин, после чего
сливают в
канализацию
(уборную)
2. Посуда из-под Погружают в один -"- После
выделений (ночные из обеззаражи-
горшки, подкладные дезинфицирующих вания
судна, мочеприемники растворов: 1% тщательно
и др.), квачи раствор промывают
хлорамина на 60 водой
мин, 1% раствор
хлорной извести
или извести
белильной
термостойкой на
60 мин или 0,5%
осветленный р-р
ДТС ГК или НГК
на 60 мин, 0,2%
сульфохлорантина
или 0,5% р-р
дезама на 60
мин, 0,2% р-р
натриевой
(калиевой) соли
ДХЦК или 1% р-р
хлордезина на
120 мин, 2%
р-р метасиликата
натрия на 60
мин
3. Посуда больного Кипятят в 2% -"- После
(чайная, столовая), р-ре питьевой обеззаражи-
освобожденная от соды в течение вания
остатков пищи 15 мин от тщательно
момента промывают
закипания или проточной
погружают в один водой
из
дезинфицирующих
р-ров на 60 мин:
1% р-р
хлорамина, 1%
осветленный р-р
хлорной извести
или извести
белильной
термостойкой,
0,5% осветленный
р-р ДТС ГК или
НГК, 0,5% р-р
дезама, 0,2% р-р
сульфохлоранти-
на; или
погружают на
120 мин в 0,2%
р-р натриевой
(калиевой) соли
ДХЦК, 1,5% р-р
хлордезина, 1,5%
р-р хлорцина;
или в 3% р-р
перекиси
водорода с 0,5%
моющего средства
или 2% р-р
метасиликата
натрия - на 30
мин; или в 0,1%
р-р ДП-2
4. Ветошь, мочалки Кипятят в 2% Так же, как при После
для мытья посуды, р-ре питьевой заключительной обеззаражи-
поверхности обеденных соды в течение дезинфекции вания
столов 15 мин от тщательно
момента прополаски-
закипания или вают в воде
погружают в один и сушат
из
дезинфицирующих
р-ров: на 60 мин
в 1% р-р
хлорамина, 1%
р-р хлорной
извести или
извести
белильной
термостойкой,
0,5% р-р ДТС ГК
или НГК, 0,2%
р-р натриевой
(калиевой) соли
ДХЦК, 0,2% р-р
сульфохлоранти-
на, 0,5% р-р
дезама или на
90 мин в 1% р-р
хлордезина, 1%
р-р хлорцина, или
на 60 мин в 2%
р-р метасиликата
натрия, или на
120 мин в 0,2%
р-р ДП-2
5. Остатки пищи Кипятят 15 мин -"- При необхо-
от момента димости к
закипания или густым и
засыпают сухой плотным
хлорной остаткам
известью или пищи
известью добавляют
белильной воду в
термостойкой из соотношении
расчета 200 1:4
г/кг, ДТС ГК или
НГК - 100 г/кг,
перемешивают и
оставляют на 60
мин или
заливают 15%
р-ром
метасиликата
натрия в
соотношении 2:1
на 240 мин, или
погружают в 0,2%
р-р ДП-2 на 120
мин
6. Помещения, Пол и стены на Ежедневно проводят Осветленные
предметы обстановки, высоту 1,5 м влажную уборку р-ры хлорной
предметы ухода за орошают из помещения не менее извести,
больными, не гидропульта 2 раз в день с извести
допускающие кипячения одним из дез. использованием одного белильной
(пузыри для льда, р-ров из расчета из дезрастворов, термостой-
грелки, подкладные 300 мл/кв.м или применяемых при кой, ДТС ГК
круги и т.п.), протирают заключительной или НГК
подкладные клеенки, ветошью, дезинфекции. Норма применяют
клеенчатые чехлы смоченной в расхода дезсредств только в
матрацев одном из при протирании - 200 отсутствие
дезрастворов: мл/кв.м поверхности. людей, в
0,5% р-ром Предметы ухода за нежилых
хлорамина, 0,5% больными, клеенки и помещениях.
осветленных т.п. обеззараживают Раствор
р-ром хлорной протиранием ветошью, метасиликата
извести или смоченной в указанных натрия для
извести растворах, и после дезинфекции
белильной экспозиции 60-30 мин поверхно-
термостойкой, промывают водой. В стей,
0,25% случае загрязнения окрашенных
осветленным пола выделениями масляной
р-ром ДТС ГК или (фекалии, рвотные краской, не
НГК, 0,1% р-ром массы) их тут же применяют.
сульфохлоранти- заливают одним из Полированную
на, 0,2% р-ром дез. р-ров: 3% мебель
натриевой осветленным р-ром протирают
(калиевой) соли хлорной извести ветошью,
ДХЦК, 0,5% р-ром белильной увлажненной
хлордезина - термостойкой, 3% "полиролью",
уборку помещения р-ром хлорамина, 1% "глянцем",
проводят через осветленным р-ром ДТС вазелиновым
60 мин: орошают ГК или НГК, 2% р-ром маслом и др.
(протирают) 0,5% метасиликата натрия, составом для
р-ром хлорцина 0,2% р-ром натриевой чистки этой
или 0,5% дезама, (калиевой) соли ДХЦК мебели
2% р-ром с последующей
метасиликата немедленной уборкой
натрия с выделений ветошью,
последующей смоченной в одном из
уборкой указанных выше р-ров,
помещения через и дезинфекцией
30 мин; при уборочного материала.
применении для Очищенные таким путем
обеззараживания места дополнительно
3% р-ра перекиси заливают на 60-30
водорода с 0,5% мин соответственно
моющего средства одним из
или 0,1% р-ра дезинфицирующих
ДП-2 р-ров, применяемых
для текущей
дезинфекции
Страницы:
Стр.1 |
Стр.2 |
Стр.3 |
Стр.4 |
Стр.5 |
Стр.6
|
